ВведениеВторичные метаболиты имеют существенноезначение для развития растений. Из классафенольных соединений в большей мере известны:простейшие фенольные соединения, оксибензойныекислоты, фенилпропаноиды и флавоноиды. Ониучаствуют во многих процессах роста и развитиярастений. Например, в пигментации, в сигнальныхи репродуктивных функциях. Есть предположения,что они могут регулировать клеточное деление.Фенольные соединения защищают растения отразличных неблагоприятных факторов окружающейсреды [1, 2].В клетках животных и человека данныесоединения не синтезируются. Их присутствие втканях зависит от потребления в пищу растительныхпродуктов. Доказано, что смертность от инфарктамиокарда, онкологических и ряда другихзаболеваний характеризуется обратной корреляцией спотреблением флавоноидов [2–5].Пищевые волокна дифференцированно влияютна выработку фенольных кислот из рутинав модели ферментации in vitro микробиотыкишечника человека. Доказано, что полифенолыусваиваются вместе с пищевыми волокнами. Они обакатаболизируются кишечной микробиотой и могутвлиять на нее. Однако взаимодействие между нимии воздействие на их результирующие микробныепродукты в настоящее время изучено не в полноймере. Взаимодействие между волокном и феноламиизменяет производство фенольных кислот и можетстать ключевым фактором в повышении пользы дляздоровья человека [6].Ассоциация привычного потребления кофес более низким риском заболеваний, таких каксахарный диабет 2 типа, хронические заболеванияпечени, некоторые виды рака или снижениесмертности, была подтверждена в проспективныхкогортных исследованиях во многих регионах мира.Молекулярный механизм до сих пор не выяснен.Радикально-очищающая и противовоспалительнаяактивность кофейных компонентов слишкомслаба, чтобы объяснить такие эффекты. H. Kolb ссоавторами утверждают, что кофе как растительнаяпища обладает полезными свойствами овощейи фруктов [7]. Недавние исследования выявилимеханизм укрепления здоровья общий для кофе,овощей и фруктов. Это активация адаптивногоклеточного ответа, характеризующегося повышениемрегуляции белков, участвующих в защите клеток,в частности антиоксидантных, детоксицирующихи восстанавливающих ферментов. Ключом к этомуответу является активация системы Nrf2 (Nuclearfactor erythroid 2-related factor-2) фенольнымифитохимическими веществами, которая индуцируетэкспрессию генов клеточной защиты. Кофе играетдоминирующую роль в этом отношении, посколькуявляется основным диетическим источникомфенольных кислот и полифенолов в развитых странахмира. Поддерживающим действием может бытьмодуляция микробиоты кишечника неперевареннымипребиотическими компонентами кофе, но имеющиесяданные все еще скудны. Исследователи пришли квыводу, что кофе использует те же пути укрепленияздоровья, что и другие овощи и фрукты. Кофейныезерна можно рассматривать как здоровуюрастительную пищу и основного поставщикапищевых фенольных фитохимикатов [7].Метаболомика – это мощный инструмент дляисследования взаимодействий между питанием,питательными веществами и метаболизмомчеловека. Ecklonia cava – съедобная коричневаяводоросль, которая встречается в Корее и Япониии содержит уникальные полифенолы, называемыефлоротанинами. В исследованиях метаболомногопрофилирования J. Kim с соавторами показано,что уровни рибофлавина, урокановой кислоты,5-гидрокси-6-метоксииндола глюкуронида игуанидино валериановой кислоты были значительноповышены в группе приема сеаполинола посравнению с группой плацебо [8]. Для выявлениясвязи между уровнями метаболитов и клиническимихарактеристиками, связанными с жировымиотложениями, был проведен корреляционныйанализ. Среди метаболитов, концентрация которыхизменялась в группе потребления сеаполинола,рибофлавин был связан с индексом массы тела,массой тела, жировой массой и процентом жира ворганизме. Эти данные свидетельствуют о том, чтоснижение жировых отложений, вызванное приемомсеаполинола, связано с усилением антиоксидантногоэффекта рибофлавина [8].Ученые стали активно изучать родиолу розовую(Rhodiola rosea L.) с конца 50-х начала 60-х гг.прошлого столетия. В результате многолетнихисследований установлены противовоспалительные,иммуномодулирующие, антистрессовые, антиокси-дантные, адаптогенные и другие положительныесвойства данного вида [9, 10, 14].Наиболее известным фенолоспиртом родиолырозовой является n-оксифенилэтанол – агликонгликозида салидрозида. Он является активнымдействующим веществом. В корневищахродиолы розовой накапливается достаточноеколичество салидрозидов [11]. Они оказываютпротивовоспалительное воздействие черезпроизводство цитокинов. Также предупреждаютпоражение клеток внутренних органов пригипоксии и ишемии и используются в качествеантиастматического средства [11]. Вещества группыфенилпропаноидов родиолы розовой (розавин,розарин, розин) имеют тонизирующий, ноотропныйи седативный эффект при использовании в лечебныхцелях [9, 13].Флавоны трицина, содержащиеся в наземнойчасти родиолы розовой, могут блокироватьсвободные радикалы и положительно влиять навосстановление внутриклеточной структуры,замедлять процессы старения. Их полезно приниматьв зоне радиоактивного излучения [2, 9]. Тирозолактивно применяется для лечения фибрилляциипредсердий при субклиническом тиреотоксикозе. Онприводит к уменьшению объема щитовидной железы,увеличивает уровень тиреотропного гормона,необходимого для оптимизации ее функций [13].Астрагалин как сильный антиоксидант можеткупировать воспалительные процессы в организме,ингибировать рост злокачественных опухолей,восстанавливать поврежденные клетки головногомозга, очищать кровеносные сосуды и укреплятькостную ткань. Следовательно, надземная частьродиолы розовой обладает совсем иными, нотакже уникальными свойствами, и может бытьпригодна для приготовления различных напитковдля профилактики и предупреждения сердечно-сосудистых заболеваний и онкологии [9].В последние годы активно развиваютсяисследования по фотодинамической терапии [15,16]. Они основаны на использовании двух групппигментов: хлорофиллов и каротиноидов. Ихпроизводные могут проявлять антибактериальные,антиоксидантные и даже противораковые свойства.По данным института питания, уровень β-каротинав плазме крови у большинства населения нашейстраны снижен в 2 раза по сравнению с населениемзарубежных стран. Это приводит к риску развитияразных форм рака. Так, ученые подтвердилиингибирование опухоли, а при удвоении дозы –полную гибель клеток, при введении β-каратина вдозе 6,25 мг/л [17]. Пополнить фонд витаминов ворганизме можно путем введения в рацион овощейи фруктов ярко-желтого и оранжевого цвета396Sergeeva I.Yu. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 3, pp. 393–403(морковь, картофель с желтой и оранжевой окраскоймякоти, абрикосы, некоторые виды дынь и тыквы),которые содержат около 80 % провитамина А вформе β-каротина. Витамин А участвует в синтезестероидных гормонов (в том числе прогестерона),сперматогенезе, является антагонистом гормонащитовидной железы – тироксина [17].Следовательно, в практике пищевыхбиотехнологий характеристика фотосинтетическогопотенциала растений, планируемых для введения вновый функциональный продукт, весьма актуальна.Объекты и методы исследованияОбъектами исследований стали три интродуциро-ванные в Кузбасс эколого-географически отдаленныепопуляции родиолы розовой (Rhodiola rosea L.): изКузнецкого Алатау, Горного Алтая и Тункинскихгольцов Бурятии. В 2018 г. корневища каждогорастения расчеренкованы на одинаковые помассе доли (40–42 г) и помещены в питомниклекарственных растений.Определение морфометрических показателейрастений. Линейные параметры побегов и листьев уродиолы розовой измеряли штангенциркулем.Определение фотосинтетических пигментов.Содержание пигментов в надземной биомассерастений осуществляли с использованием спектро-фотометра марки Jenway 6305 UV/VIS по методике,изложенной в [18].Определение фенольных соединений. Определе-ние биологически активных веществ в биомассеродиолы розовой осуществляли методамивысокоэффективной жидкостной (ВЭЖХ) итонкослойной (ТСХ) хроматографии. Подготовкупроб и идентификацию веществ проводили пометодике, описанной в [18].Количественный анализ исследуемых вторичныхметаболитов (флавонов) определяли с помощьюкалибровочных кривых, построенных в диапазонеконцентраций 1,9–235 мкг/мл [20, 21].Статистическая обработка результатовисследования. Все эксперименты проведеныв трех-четырех кратной повторности. Данныепредставлены по среднему значению показателей истандартному отклонению. Статистический анализрезультатов выполнен с помощью однофакторногодисперсионного анализа с использованием програм-много обеспечения Statistica 6.0.Результаты и их обсуждениеИдентифицированные биологически активныевещества в корневищах с корнями в популяцииродиолы розовой (Rhodiola rosea L.) Горного Алтаяпредставлены на рисунке 1 и в таблице 1.Хроматографический профиль отражает превали-рующее количество салидрозида (пик 18). На 20,4 %и 63,6 % меньше содержание розеина и галловойкислоты. Малое количество розавина, которыйотвечает за антифунгицидные, антимикробные,Рисунок 1. Хроматограмма этанольного извлеченияфенолов из корневища и корней родиолы розовой(Rhodiola rosea L.) в популяции Горного АлтаяFigure 1. Chromatogram of ethanol extraction of phenols fromthe rhizome and roots of Rhodiola rosea L. (Gorny Altai)Таблица 1. Содержание фенольных соединений в корневищах и корнях родиолы розовой (Rhodiola rosea L.)из популяции Горного АлтаяTable 1. Content of phenolic compounds in the rhizomes and roots of Rhodiola rosea L. (Gorny Altai)Компонент Время удерживания, сек Номер пика хроматограммы Количественное содержание, мг/гТриандрин 497,64 4 4,85 ± 0,98Гербацетин 777,66 6 0,42 ± 0,05Галловая кислота 892,92 7 10,26 ± 2,31Розеин 1080,60 8 20,45 ± 3,46Дафнетицин 1158,42 9 13,8 ± 2,30Плантамайозид 1284,60 10 2,74 ± 0,25Розарин 1303,68 11 2,47 ± 0,25Сирингин 1394,00 12 4,86 ± 0,86Кемпферол 1463,00 13 2,20 ± 0,23Розавин 1516,00 14 1,63 ± 0,16Гербацитин 1661,19 16 1,13 ± 0,12Салидрозид 2205,12 18 28,16 ± 2,27397Сергеева И. Ю. Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 3 С. 393–403антиоксидантные и другие функции. Из 12 идентифи-цированных БАВ от 5 до 10 % в общем объемезанимают триандрин, розарин и сирингин, более10 % – дафнетицин, розеин, галловая кислота исалидрозид.В популяции из Кузнецкого Алатау выделено 5выраженных пиков на хроматограмме (рис. 2). Онисоответствуют таким важным для медицинского ипищевого использования биологически активнымвеществам, как розавин, салидрозид, розин, розарин иметилгаллат (табл. 2).Полученные результаты свидетельствуют осущественном накоплении розовина в корневищах скорнями исследуемой популяции. Его количествен-ное содержание находится на уровне 37 %от общего числа идентифицированных фенолов.Существенную долю (32 %) в структуре БАВродиолы розовой из популяции Кузнецкого Алатаузанимает салидрозид. На такие важные компоненты,как розарин, розин и метилгаллат, приходится около1/3 от общего объема.В исследуемом виде родиолы розовой самогогеографически удаленного местообитания(Тункинские хребты, Бурятия) наблюдаетсясхожий с предыдущим образцом растения составфитохимических компонентов как по численности,так и по фактическим значениям в отношениинекоторых БАВ (рис. 3, табл. 3).Показано, что почти половина от суммыидентифицированных биологически активныхвеществ родиолы розовой данной популяцииприходится на долю метилгаллата. В корневищахс корнями установлено значительное содержаниерозавина и коричного альдегида. Меньше всегоРисунок 2. Хроматограмма этанольного извлеченияфенолов из корневища и корней родиолы розовой(Rhodiola rosea L.) в популяции Кузнецкого АлатауFigure 2. Chromatogram of ethanol extraction of phenols fromthe rhizome and roots of Rhodiola rosea L. (Kuznetsk Alatau)Таблица 2. Содержание фенольных соединений в корневищах и корнях родиолы розовой (Rhodiola rosea L.)из популяции Кузнецкого АлатауTable 2. Content of phenolic compounds in the rhizomes and roots of Rhodiola rosea L. (Kuznetsk Alatau)Компонент Время удерживания, сек Номер пика хроматограммы Количественное содержание, мг/гРозавин 721,80 1 16,89 ± 2,11Салидрозид 354,12 3 14,35 ± 2,52Розин 780,23 2 5,04 ± 0,93Розарин 1331,65 4 2,01 ± 0,37Метилгаллат 732,25 5 6,80 ± 1,05Рисунок 3. Хроматограмма этанольного извлеченияфенолов из корневища и корней родиолы розовой (Rhodiolarosea L.) в популяции Тункинских хребтов БурятииFigure 3. Chromatogram of ethanol extraction of phenols fromthe rhizome and roots of Rhodiola rosea L. (Tunka ridge, Buryatia)Таблица 3. Содержание фенольных соединений в корневищах и корнях родиолы розовой (Rhodiola rosea L.)из популяции Тункинских хребтов БурятииTable 3. Content of phenolic compounds in the rhizomes and roots of Rhodiola rosea L (Tunka ridge, Buryatia)Компонент Время удержания, сек Номер пика хромотограммы Количественное содержание, мг/гМетилгаллат 97,2 1 39,00 ± 1,05Салидрозид 133,8 11 1,82 ± 2,52Коричный альдегид 318,6 5 10,15 ± 1,93Розавин 652,8 9 20,72 ± 2,11Розарин 725,4 6 1,59 ± 0,37Розин 975,6 2 6,39 ± 0,93398Sergeeva I.Yu. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 3, pp. 393–403в популяции этой эколого-географической зонысформировано салидрозида. Отличительнойособенностью данной популяции родиолы розовойявляется наличие коричного альдегида.Сравнительная оценка количественногосодержания по сумме трех одинаково обнаруженныхи идентифицированных в корневище с корнями трехпопуляций родиолы розовой (рис. 4) показала, чтомаксимальное накопление салидрозида отмеченов популяции родиолы розовой, районированной вГорном Алтае. При этом в результате вторичногометаболизма в популяциях растения КузнецкогоАлатау и Бурятии синтезируется соизмеримоеколичество розавина.Вследствие обнаружения большего спектра БАВв корневище с корнями популяции родиолы розовойГорного Алтая исследовали надземную биомассуэтой популяции (рис. 5, табл. 4). Выявлено высокоенакопление пяти фитохимических соединений.Установлено, что на долю трицина и егопроизводных приходится более половины (56,6 %)от всего объема идентифицированных БАВ.Почти третью часть (27,9 %) занимает астрагалин,15,6 % – тирозол.Анализ биоматериала корневищ с корнямии надземной биомассы родиолы розовой,интродуцированных из трех эколого-географическиотдаленных ареалов, позволил установить, чтоони существенно отличаются по содержаниюбиологически активных веществ. Изменчивостьпоказателей по одним и тем же компонентам БАВсвязана с почвенно-климатическими факторамиместообитания растений: световым, тепловым,водным и питательным режимами фрагментарныхпочв.Для практического извлечения максимальногоколичества и привлечения в пищевые биотехнологииможно рекомендовать биоматериал, районированныйпо территориям: розавин, салидрозид и метилгаллат– Кузнецкий Алатау; салидрозид, галловая кислота,дафнетицин и розеин – Горный Алтай; метилгаллат,розавин и коричный альдегид – Тункинские хребты;трицин и его производные, астрагалин и тирозол – изнадземной биомассы родиолы розовой в популяцииГорного Алтая.От степени развития морфометрическиххарактеристик растения зависит уровень фотосинтезаи накопления пластических веществ в корневищах.Это дает прогноз того насколько можно ожидатьразницу в накоплении общей биологическойРисунок 4. Количественное содержание БАВ по сумме трехравно обнаруженных и идентифицированных в корневищес корнями исследуемых популяций родиолы розовой(Rhodiola rosea L.)Figure 4. Quantitative content of biologically active substancesin the rhizome and roots of the three samples of Rhodiola rosea L.Рисунок 5. Хроматограмма этанольного извлеченияфенолов из надземной биомассы родиолы розовой(Rhodiola rosea L.) в популяции Горного АлтаяFigure 5. Chromatogram of ethanol extraction of phenols fromthe top biomass of Rhodiola rosea L. (Gorny Altai)Таблица 4. Содержание фенольных соединений в надземной биомассе родиолы розовой (Rhodiola rosea L.)из популяции Горного АлтаяTable 4. Content of phenolic compounds in the top biomass of Rhodiola rosea L. (Gorny Altai)Компонент Время удерживания,секНомер пикахроматограммыКоличественноесодержание, мг/гАстрагалин 1068,30 8 38,94 ± 2,21Трицин-5-О-β-D-глюкопиранозид 1123,79 10 35,25 ± 1,66Трицин-7-О-β-D-глюкопиранозид 1152,96 9 30,23 ± 1,45Тирозол 1477,08 14 21,80 ± 1,21Трицин 1754,94 2 13,07 ± 0,72399Сергеева И. Ю. Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 3 С. 393–403продуктивности корневищ и травянистой части, содной стороны, фотосинтетической продуктивности,с другой. Побег и листья имеют хорошо выраженнуюзеленую окраску. Но важно понимать насколькоизучаемые популяции различны по накоплениюфотосинтетических пигментов, имеющих значение впрофилактике заболеваний и поддержании здоровьяу разных групп населения.В данном исследовании представлены результатыизмерений линейных параметров побегов в периодвесенней вегетации (2019–2020 гг.) (табл. 5) ианализа содержания фотосинтетических пигментовв надземной массе родиолы розовой различныхпопуляций (табл. 6).При культивировании интродуцированныхпопуляций родиолы розовой отмечено, что образцысущественно отличаются по фенотипу растения, поразмерам и форме листьев. Растения из популяцииГорного Алтая сформировали куст из большего числапобегов (9–11 шт) по сравнению с образцами изКузнецкого Алатау (5–7 шт) и Тункинских гольцов(Бурятия) (6–8 шт).В надземной биомассе родиолы розовойизучаемых популяций накапливается порядка0,333 мг/г хлорофиллов а и b в суммарномвыражении. При этом на треть меньше синтезируетсякаротиноидов. На этом фоне на диапазон от9,6 % до 18,3 % больше накапливают хлорофиллыа и b образцы растения из популяции КузнецкогоАлатау и Горного Алтая. Последний из вышеупомянутых имеет достоверное превышение посодержанию каротиноидов (на 26,3 %), в сравнениис показателями второго образца, но находится наодном уровне с показателями популяции родиолырозовой с Тункинских хребтов.В результате расчета коэффициентов корреляциимежду содержанием фотосинтетических компонентовс морфометрическим признаками (размерностьюпобегов, числом листьев на побеге и их плотностью)установлено только две положительно высокихзависимости – по содержанию каротиноидов ичисла листьев (r = 0,89 ± 0,09) и по содержаниюкаротиноидов и длины побега (r = 0,96 ± 0,22) (табл. 7).По другим парам признаков корреляционныесвязи были статистически незначительными илисредними.Таким образом, показана возможностьизвлечения фотосинтетических пигментов изТаблица 5. Средние параметры побегов родиолы розовой (Rhodiola rosea L.) различных популяций (2019–2020 гг.)Table 5. Average dimensions of Rhodiola rosea L. shoots in different plant communities (2019–2020)Популяция растений Длина побега,смЧисло листьев,штПлотностьлистьевДиаметр побега, ммв основании в середине под верхним листомГорный Алтай 13,20 ± 0,03 35,00 ± 0,68 9,40 ± 0,24 3,60 ± 0,05 3,10 ± 0,07 2,20 ± 0,08Кузнецкий Алатау 8,18 ± 0,04 14,80 ± 0,11 7,26 ± 0,07 5,00 ± 0,06 3,80 ± 0,06 2,10 ± 0,06Тункинские хребты 12,03 ± 0,09 42,20 ± 0,12 14,10 ± 0,11 4,80 ± 0,10 3,40 ± 0,07 2,50 ± 0,07Таблица 6. Содержание фотосинтетических пигментов в надземной массе родиолы розовой (Rhodiola rosea L.)различных популяций (2019–2020 гг.)Table 6. Content of photosynthetic pigments in the top mass of Rhodiola rosea L. from different plant communities (2019–2020)Популяция растений Содержание хлорофиллов, мг/г Содержаниекаротиноидов, мг/г (%)Соотношение хлорофиллова b а + b а/b (а + b)/каротиноидовГорный Алтай 0,258 0,120 0,378 2,15 0,122 (32,3) 3,10Кузнецкий Алатау 0,230 0,090 0,323 2,55 0,090 (27,9) 3,59Тункинские хребты 0,212 0,085 0,297 2,49 0,115 (37,8) 2,58Среднее 0,233 0,098 0,333 2,40 0,109 3,05Размах варьировния 0,046 0,035 0,081 0,40 0,032 1,01Таблица 7. Зависимость содержания фотосинтетических пигментов от морфометрических показателей растенийTable 7. Content of photosynthetic pigments vs. morphometric dimentions of plantsПоказатели Коэффициент корреляции (R ± r)содержаниехлорофилла aсодержаниехлорофилла bсодержаниехлорофиллов (a + b)содержаниекаротиноидовДлина побега 0,37 ± 0,10 0,63 ± 0,15 0,37 ± 0,08 0,96 ± 0,22Число листьев 0,58 ± 0,09 0,43 ± 0,10 0,64 ± 0,13 0,89 ± 0,09Плотность листьев 0,21 ± 0,06 0,17 ± 0,04 0,011 ± 0,03 0,65 ± 0,09Диаметр побега 0,34 ± 0,010 0,18 ± 0,04 0,46 ± 0,11 0,21 ± 0,06400Sergeeva I.Yu. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 3, pp. 393–403надземной биомассы родиолы розовой для целевогоиспользования в пищевых технологиях. Однако внастоящее время для этих целей в большей мереиспользуют фитохимические вещества из корневищи корней.ВыводыВ ходе исследований идентифицировано 12 биоло-гически активных компонента фенольной природыиз популяции родиолы розовой (Rhodiola rosea L.)Горного Алтая. В корневищах с корнями установленомаксимальное содержание (мг/г) галловой кислоты(10,26 ± 2,31), розеина (20,45 ± 3,46), дафнетицина(13,80 ± 2,30) и салидрозида (28,16 ± 2,27); внадземной части растения – астрагалина (38,94 ±2,21), трицина (13,07 ± 0,72) и его производных –трицин-5-О-β-D-глюкопиранозида (35,25 ± 1,66),трицин-7-О-β-D-глюкопиранозида (30,23 ± 1,45),тирозола (21,80 ± 1,21).Идентифицировано 5 биологически активныхкомпонентов фенольной природы из популяцииродиолы розовой Кузнецкого Алатау с максимальнымсодержанием (мг/г) в корневищах с корнями розавина(16,89 ± 2,11) и салидрозида (14,35 ± 2,52).Идентифицировано 6 биологически активныхкомпонентов фенольной природы из популяцииродиолы розовой Тункинских хребтов Бурятии смаксимальным содержанием (мг/г) в корневищах скорнями розавина (20,72 ± 2,11), метилгалата (39,00 ±1,05) и коричного альдегида (10,15 ± 1,93).В среднем в надземной биомассе родиолы розовойизучаемых популяций накапливается порядка0,333 мг/г хлорофиллов а и b в суммарном выражении.При этом каротиноидов синтезируется 0,109 мг/гпо трем популяциям. Установлены коэффициентыкорреляции между содержанием фотосинтетическихкомпонентов с морфометрическим признаками.Обнаружены две положительно высоких зависимости– по содержанию каротиноидов и числа листьев(r = 0,89 ± 0,09) и по содержанию каротиноидов идлины побега (r = 0,96 ± 0,22).Для сохранения биоразнообразия ареаловродиолы розовой как вида, занесенного в Краснуюкнигу Российской Федерации и в Красные книгибольшинства субъектов РФ, рекомендуется активновводить уникальные растения в биотехнологиимикроклонального размножения, селективногоотбора форм с повышенным содержанием вторичныхметаболитов и последующего выращивания вкультуре in vitrо. Индивидуальный отбор генотиповс повышенными показателями БАВ и последующимвведением в культуру in vitro позволит без ущербадля окружающей среды получать планируемыйобъём вторичных метаболитов.Критерии авторстваИ. Ю. Сергеева – аналитический обзор литера-туры, написание и общая редакция рукописи.А. В. Заушинцена – методология и организацияисследований. Е. Н. Брюхачев – получение факти-ческого материала.Конфликт интересовАвторы заявляют об отсутствии конфликтаинтересов.ContributionI.Yu. Sergeeva reviewed scientific sources, wroteand proof-read the manuscript. A.V. Zaushintsenadeveloped the methodology and supervised the research.E.N. Bryukhachev was responsible for obtaining thefactual material.Conflict of interestThe authors declare that there is no conflict of interestregarding the publication of this article